Pathogenicity and phenotypic sulfadiazine resistance of Toxoplasma gondii isolates obtained from livestock in northeastern Brazil.
Toxoplasma gondii is the causative protozoan agent of toxoplasmosis, which is a common infection that is widely distributed worldwide. Studies revealed stronger clonal strains in North America and Europe and genetic diversity in South American strains. Our study aimed to differentiate the pathogenicity and sulfadiazine resistance of three T. gondii isolates obtained from livestock intended for human consumption. The cytopathic effects of the T. gondii isolates were evaluated. The pathogenicity was determined by polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) using a CS3 marker and in a rodent model in vivo. Phenotypic sulfadiazine resistance was measured using a kinetic curve of drug activity in Swiss mice. IgM and IgG were measured by ELISA, and the dihydropteroate synthase (DHPS) gene sequence was analysed. The cytopathic effects and the PCR-RFLP profiles from chickens indicated a different infection source. The Ck3 isolate displayed more cytopathic effects in vitro than the Ck2 and ME49 strains. Additionally, the Ck2 isolate induced a differential humoral immune response compared to ME49. The Ck3 and Pg1 isolates, but not the Ck2 isolate, showed sulfadiazine resistance in the sensitivity assay. We did not find any DHPS gene polymorphisms in the mouse samples. These atypical pathogenicity and sulfadiazine resistance profiles were not previously reported and served as a warning to local health authorities.
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Laboratório de Biologia da Malária e Toxoplasmose, Natal, RN, Brasil.
Claudio Bs
CB
Oliveira
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Laboratório de Biologia da Malária e Toxoplasmose, Natal, RN, Brasil.|Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Fisiologia, Laboratório de Estudos da Memória, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Fisiologia, Laboratório de Estudos da Memória, Natal, RN, Brasil.
Ywlliane Sr
YS
Meurer
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Laboratório de Biologia da Malária e Toxoplasmose, Natal, RN, Brasil.
Joelma Ma
JM
Andrade
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Bioquímica, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Bioquímica, Laboratório de Biologia Molecular Aplicada, Natal, RN, Brasil.
Maria Esm
ME
Costa
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Laboratório de Biologia da Malária e Toxoplasmose, Natal, RN, Brasil.|Universidade Federal de Minas Gerais, Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Parasitologia, Belo Horizonte MG , Brasil, Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Parasitologia, Belo Horizonte, MG, Brasil.
Milena Mc
MM
Andrade
Universidade Federal de Minas Gerais, Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Parasitologia, Belo Horizonte MG , Brasil, Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Parasitologia, Belo Horizonte, MG, Brasil.
Letícia A
LA
Silva
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Bioquímica, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Bioquímica, Laboratório de Biologia Molecular Aplicada, Natal, RN, Brasil.
Daniel Cf
DC
Lanza
Universidade Federal de Minas Gerais, Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Parasitologia, Belo Horizonte MG , Brasil, Universidade Federal de Minas Gerais, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Parasitologia, Belo Horizonte, MG, Brasil.
Ricardo Wa
RW
Vítor
Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Natal RN , Brasil, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Centro de Biociências, Departamento de Microbiologia e Parasitologia, Laboratório de Biologia da Malária e Toxoplasmose, Natal, RN, Brasil.
Valter F
VF
Andrade-Neto
D000818:Animals; D016054:DNA, Protozoan / Q000302:isolation & purification; D005260:Female; D005838:Genotype; D058751:Livestock / Q000469:parasitology*; D051379:Mice; D008810:Mice, Inbred C57BL; D021261:Parasitic Sensitivity Tests; D010641:Phenotype; D010802:Phylogeny; D012150:Polymorphism, Restriction Fragment Length; D013411:Sulfadiazine / Q000494:pharmacology*; D013997:Time Factors; D014122:Toxoplasma / Q000187:drug effects* / Q000472:pathogenicity*; D014774:Virulence
D016054:DNA, Protozoan; D013411:Sulfadiazine