DIAGNOSIS OF Strongyloides stercoralis INFECTION IN IMMUNOCOMPROMISED PATIENTS BY SEROLOGICAL AND MOLECULAR METHODS.
Strongyloidiasis is a potentially serious infection in immunocompromised patients. Thus, the availability of sensitive and specific diagnostic methods is desirable, especially in the context of immunosuppressed patients in whom the diagnosis and treatment of strongyloidiasis is of utmost importance. In this study, serological and molecular tools were used to diagnose Strongyloides stercoralis infections in immunosuppressed patients. Serum and stool samples were obtained from 52 patients. Stool samples were first analyzed by Lutz, Rugai, and Agar plate culture methods, and then by a quantitative real time polymerase chain reaction (qPCR). Serum samples were evaluated by an enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using a soluble (AS) or a membrane fractions antigen (AM) obtained from alkaline solutions of the filariform larvae of Strongyloides venezuelensis. Of the 52 immunosuppressed patients, three (5.8%) were positive for S. stercoralis by parasitological methods, compared to two patients (3.8%) and one patient (1.9%) who were detected by ELISA using the AS and the AM antigens, respectively. S. stercoralis DNA was amplified in seven (13.5%) stool samples by qPCR. These results suggest the utility of qPCR as an alternative diagnostic tool for the diagnosis of S. stercoralis infection in immunocompromised patients, considering the possible severity of this helminthiasis in this group of patients.
Universidade de São Paulo, Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: femalta@yahoo.com; duartemarques@outlook.com; jrrpinho@gmail.com; rcbgry@usp.br; pchieffi@usp.br.|Universidade de São Paulo, Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina, Laboratório de Investigação Médica. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: marcelo.corral@usp.br; duartemarques@outlook.com; maira.gottardi@usp.br; dircemarylima@hotmail.com; yamashiro@hc.fm.usp.br; rcbgry@usp.br.
Fabiana Martins de
FM
Paula
Universidade de São Paulo, Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: femalta@yahoo.com; duartemarques@outlook.com; jrrpinho@gmail.com; rcbgry@usp.br; pchieffi@usp.br.|Universidade de São Paulo, Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina Laboratório de Gastroenterologia e Hepatologia Tropical. São Paulo, SP, Brazil. E-mail: femalta@yahoo.com; jrrpinho@gmail.com.
Fernanda Mello
FM
Malta
Universidade de São Paulo, Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina, Laboratório de Investigação Médica. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: marcelo.corral@usp.br; duartemarques@outlook.com; maira.gottardi@usp.br; dircemarylima@hotmail.com; yamashiro@hc.fm.usp.br; rcbgry@usp.br.
Marcelo Andreetta
MA
Corral
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Priscilla Duarte
PD
Marques
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Maiara
M
Gottardi
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Dirce Mary Correia Lima
DM
Meisel
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Juliana
J
Yamashiro
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João Renato Rebello
JR
Pinho
Universidade de São Paulo, Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina, Seção de Parasitologia, Divisão de Laboratório Central. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: vera.castilho@hc.fm.usp.br; elenice.gonçalves@hc.fm.usp.br.
Vera Lucia Pagliusi
VL
Castilho
Universidade de São Paulo, Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina, Seção de Parasitologia, Divisão de Laboratório Central. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: vera.castilho@hc.fm.usp.br; elenice.gonçalves@hc.fm.usp.br.
Elenice Messias do Nascimento
EM
Gonçalves
Universidade de São Paulo, Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: femalta@yahoo.com; duartemarques@outlook.com; jrrpinho@gmail.com; rcbgry@usp.br; pchieffi@usp.br.|Universidade de São Paulo, Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina, Laboratório de Investigação Médica. São Paulo, SP, Brazil. E-mails: marcelo.corral@usp.br; duartemarques@outlook.com; maira.gottardi@usp.br; dircemarylima@hotmail.com; yamashiro@hc.fm.usp.br; rcbgry@usp.br.
Ronaldo César Borges
RC
Gryschek
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